寻源宝典SDS-PAGE胶配方大揭秘
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本文揭秘SDS-PAGE胶的经典配方,涵盖分离胶与浓缩胶的配比技巧,以及配方优化的实用建议,助你轻松掌握蛋白电泳实验的关键。
一、基础配方:分离胶与浓缩胶的黄金比例
做SDS-PAGE胶就像做蛋糕,配方比例是灵魂!分离胶(下层胶)的常用配方是:30%丙烯酰胺溶液、1.5M Tris-HCl(pH 8.8)、10% SDS、10%过硫酸铵(APS)、TEMED,最后用超纯水补足体积。比如配10ml 12%分离胶,需要4ml丙烯酰胺溶液、2.5ml Tris-HCl、0.1ml SDS、0.1ml APS、0.004ml TEMED,再加3.3ml水。浓缩胶(上层胶)则用1M Tris-HCl(pH 6.8),其他成分比例更低,比如5%浓缩胶的丙烯酰胺溶液只需1.33ml,Tris-HCl加1.25ml,水补到5ml即可。
二、配方优化:根据蛋白大小调整浓度
蛋白分子量不同,胶的浓度也要“量身定制”!小分子蛋白(10-30kDa)用15%-20%高浓度胶,像分离肽段时,20%胶能让小蛋白跑得更集中;大分子蛋白(100-200kDa)则选8%-10%低浓度胶,比如分离抗体时,10%胶能避免蛋白“卡壳”在胶里。浓缩胶浓度通常固定在4%-5%,因为它只负责把蛋白压成一条直线,浓度太高反而会让样品扩散。
三、避坑指南:新手常犯的3个错误
APS和TEMED现用现加:这两者是促凝剂,放久了会失效!APS最好分装成小份,-20℃保存,用前解冻;TEMED要避光,用后立刻拧紧瓶盖。
灌胶后别晃动:分离胶灌到距离梳子下缘1cm时,加水封胶,等胶凝固(约30分钟)再倒掉水,插梳子。如果晃动,胶表面会不平,影响电泳条带。
梳子拔出时机:浓缩胶凝固后(约15分钟),别急着拔梳子!先用电泳缓冲液润湿梳子两侧,轻轻垂直拔出,避免胶孔变形。
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